试验室常用缓冲液常用引物序列汇总

实验常用试剂、缓冲液的配制方法实验常用试剂、缓冲液的配制方法 1 1、、1M Tris-HCl1M Tris-HCl□组份浓度 1 M Tris-HCl （pH7.4，7.6，8.0） □配制量 1L □配置方法 1. 称量 121.1gTris 置于 1L 烧杯中。 2. 加入约 800mL 的去离子水，充分搅拌溶解。 3. 按下表量加入浓盐酸调节所需要的 pH 值。 pH 值浓 HCl 7.4约 70mL 7.6约 60mL 8.0约 42mL 4. 将溶解定容至 1L。 5. 高温高压灭菌后，室温保存。 注意：应使溶液冷却至室温后再调定 pH 值，因为 Tris 溶液的 pH 值随温度的变化差很大，温度每升高 1℃，溶液的 pH 值大约降低 0.03 个单位。 2 2、、1.5 M Tris-HCl1.5 M Tris-HCl□组份浓度 1.5 M Tris-HCl （pH8.8）□配制量 1L □配置方法 1.称取 181.7gTris 置于 1L 烧杯中。 2. 加入约 800mL 的去离子水，充分搅拌溶解。 3. 用浓盐酸调 pH 值至 8.8。 4. 将溶液定容至 1L。 5. 高温高压灭菌后，室温保存。 注意：应使溶液冷却至室温后再调定 pH 值，因为Tris 溶液的 pH 值随温度的变化差异很大，温度每升高1℃，溶液的pH 值大约 降低 0.03 个单位。 3 3、、10×10×TE BufferTE Buffer□组份浓度 100 mM Tris-HCl，10 mM EDTA （pH 7.4，7.6，8.0） □配制量 1L □配置方法 1. 量取下列溶液，置于 1L 烧杯中。 1 M Tris-HCl Buffer（pH7.4，7.6，8.0） 100mL 500 mM EDTA（pH8.0） 20mL 2. 向烧杯中加入约 800mL 的去离子水，均匀混合。 3. 将溶液定至 1L 后，高温高压灭菌。 4. 室温保存。 4 4、、3 M3 M 醋酸钠醋酸钠□组份浓度 3 M 醋酸钠 （pH5.2）□配制量 100mL □配置方法 1. 称取 40.8gNaOAc•3H2O 置于 100～200mL 烧杯 中，加入约 40mL 的去离子水搅拌溶解。 2. 加入冰乙酸调节 pH 值至 5.2。 3. 加入去离子水将溶液定容至 100mL。 4. 高温高压灭菌后，室温保存。 5 5、、 PBS BufferPBS Buffer□组份浓度 137 mM NaCl， 2.7mM KCl， 10 mM Na2HPO4，2 mM KH2PO4 □配制量 1L □配置方法 1. 称量下列试剂，置于 1L 烧杯中。 NaCl8 g KCl0.2g Na2HPO4 1.42 g KH2PO4 0.27g 2. 向烧杯中加入约 800 mL 的去离子水，充分搅拌溶解。 3. 滴加 HCl 将 pH 值调节至 7.4，然后加入去离子水将溶液定 容至 1L。 4. 高温高压灭菌后，室温保存。 注意：上述 PBS Buffer 中无二价阳离子，如需要，可在配方中 补充 1mM CaCl2 和 0.5 mM MgCl2。 6 6、、10 M10 M 醋酸铵醋酸铵□组份浓度 10 M 醋酸铵 □配制量 100mL □配置方法 1. 称量 77.1g 醋酸铵置于 100～200 mL 烧杯中，加 入约 30 mL 的去离子水搅拌溶解。 2.加去离子水将溶液定容至 100mL。 3.使用 0.22μm 滤膜过滤除菌。 4.密封瓶口于室温保存。 注意：醋酸铵受热易分解，所以不能高温高压灭菌。 7 7、、Tris- HClTris- HCl 平衡苯酚平衡苯酚□配置方法 1. 使用原料：大多数市售液化苯酚是清亮无色的，无需重蒸馏 便可用于分子生物学实验。但有些液化苯酚呈粉红色或黄色，应避 免使用。同时也应避免使用结晶苯酚，结晶苯酚必须在 160℃对其 进行重蒸馏除去诸如醌等氧化产物， 这些氧化产物可引起磷酸二酯 键的断裂或导致RNA和DNA的交联等。 因此， 苯酚的质量对DNA、 RNA 的提取极为重要，我们推荐使用高质量的苯酚进行分子生物 学实验。 2. 操作注意：苯酚腐蚀性极强，并可引起严重灼伤，操作时 应戴手套及防护镜等。所有操作均应在通风橱中进行，与苯酚接触 过的皮肤部位应用大量水清洗，并用肥皂和水洗涤，忌用乙醇。 3. 苯酚平衡：因为在酸性 pH 条件下 DNA 分配于有机相，因 此使用苯酚前必须对苯酚进行平衡使其 pH 值达到 7.8 以上，苯酚 平衡操作方法如下： ① 液化苯酚应贮存于-20℃，此时的苯酚呈现结晶状态。从 冰柜中取出的苯酚首先在室温下放置使其达到室温，然后在 68℃ 水浴中使苯酚充分溶解。 ② 加入羟基喹啉（8-Quinolinol）至终浓度 0.1％。该化合物 是一种还原剂、RNA 酶的不完全抑制剂及金属离子的弱螯合剂， 同时因其呈黄色。有助于方便识别有机相。 ③ 加入等体积的 1M Tris-HCl（pH8.0），使用磁力搅拌器搅 拌 15 分钟，静置使其充分分层后，除去上层水相。 ④ 重复操作步骤③。 ⑤ 加入等体积的 0.1M Tris-HCl（pH8.0），使用磁力搅拌器 搅拌 15 分钟，静置使其充分分层后，除去上层水相。 ⑥ 重复操作步骤⑤，稍微残留部分上层水相。 ⑦ 使用 pH 试纸确认有机相的 pH 值大于 7.8。 ⑧ 将苯酚置于棕色玻璃瓶中 4℃避光保存。 8 8、苯酚、苯酚/ /氯仿氯仿/ /异戊醇异戊醇 □配置方法 1. 说明：从核酸样品中除去蛋白质时常常使用苯/酚/氯仿/异 戊醇（25：24：1）。氯仿可使蛋白（25 ：24 ：1） 质变性并有 助于液相与有机相的分离， 而异戊醇则有助于消除抽提过程中出现 的气泡。 2. 配置方法：将 Tris-HCl 平衡苯酚与等体积的氯仿/异戊醇 （24：1）均匀混合后，移入棕色玻璃瓶中 4℃保存。 9 9、、1010％（％（W/VW/V））SDSSDS □组份浓度 10％（W/V）SDS □配制量 100mL □配置方法 1.称量 10g 高纯度的 SDS 置于 100～200mL 烧杯中， 加入约 80mL 的去离子水，68℃加热溶解。 2. 滴加数滴浓盐酸调节 pH 值至 7.2。 3. 将溶液定容至 100mL 后，室温保存。 1010、、2 N NaOH2 N NaOH□组份浓度 2N NaOH □配制量 100mL □配置方法 1.量取 80mL 去离子水置于 100～200mL 塑料烧杯中（NaOH 溶解过程中大量放热，有可能使玻璃烧杯炸裂）。 2. 称取 8g NaOH 小心地逐渐加入到烧杯中，边加边搅拌。 3. 待NaOH完全溶解后， 用去离子水将溶液体积定容至100mL。 4. 将溶液转移至塑料容器中后，室温保存。 1111、、2.5 N HCl2.5 N HCl□组份浓度 2.5 N HCl □配制量 100mL □配置方法 1. 在 78.4mL 的去离子水中加入 21.6mL 的浓盐酸 （11.6N），均匀混合。 2. 室温保存。 1212、、5 M NaCl5 M NaCl□